細胞冷凍的原理：細胞凍存及復蘇的基本原則是慢凍快融，實驗證明這樣可以比較大限度的保存細胞活力。如今細胞凍存多采用甘油或二甲基亞砜作保護劑，這兩種物質能提高細胞膜對水的通透性，加上緩慢冷凍可使細胞內的水分滲出細胞外，減少細胞內冰晶的形成，從而減少由于冰晶形成造成的細胞損傷。復蘇細胞應采用快速融化的方法，這樣可以保證細胞外結晶在很短的時間內即融化，避免由于緩慢融化使水分滲入細胞內形成胞內再結晶對細胞造成損傷。細胞凍存是細胞保存的主要方法之一。利用凍存技術將細胞置于-196℃液氮中低溫保存，可以使細胞暫時脫離生長狀態而將其細胞特性保存起來，這樣在需要的時候再復蘇細胞用于實驗。而且適度地保存一定量的細胞，可以防止因正在培養的細胞被污染或其他意外事件而使細胞丟種，起到了細胞保種的作用。除此之外，還可以利用細胞凍存的形式來購買、寄贈、交換和運送某些細胞。細胞凍存時向培養基中加入保護劑--終濃度5%．15%的甘油或二甲基亞砜(DMSO)，可使溶液冰點降低，加之在緩慢凍結條件下，細胞內水分透出，減少了冰晶形成，從而避免細胞損傷。采用"慢凍快融"的方法能較好地保證細胞存活。細胞凍存可以分為程序降溫凍存與非程序降溫凍存。廈門鄭州無血清細胞凍存液

細胞凍存的基本原理：細胞代謝過程需要各種蛋白酶的參與，而這些蛋白酶在環境溫度低于-70℃時會集體不工作，低溫貯藏的目的是通過較低溫使細胞代謝活動近乎停止。細胞因此進入休眠狀態，使細胞“不會老”，所以可以長期保存。因為凍融過程對所有細胞和組織都是有一定傷害的，因此，需要開發出有效的技術來防止細胞死亡和損傷。低溫保護劑可保護細胞不受細胞內冰凍影響，目前多采用DMSO，甘油，乙二醇和丙二醇等滲透型低溫保護劑。它們的作用機制包括：自由進入細胞，取代水，使冰點下降，充當鹽的二次溶劑，提高細胞膜對水的通透性。合肥無血清細胞凍存液廠家直銷無血清細胞凍存液：一些保護劑，易于穿透細胞，避免細胞內部水分子形成冰晶損傷細胞。

細胞凍存是細胞保存的主要方法之一。利用凍存技術將細胞置于-196℃液氮中低溫保存，可以使細胞暫時脫離生長狀態而將其細胞特性保存起來，這樣在需要的時候再復蘇細胞用于實驗。而且適度地保存一定量的細胞，可以防止因正在培養的細胞被污染或其他意外事件而使細胞丟種，起到了細胞保種的作用。為什么要進行細胞凍存？連續培養的細胞系容易發生遺傳漂變，有限細胞系較終會發生衰老，所有培養的細胞都易受到微生物污染，即使運轉情況較好的實驗室也會遇到設備故障的問題。由于已建立的細胞系是一種寶貴資源，更換細胞系成本高昂，而且耗費時間，因此，十分有必要將細胞冷凍起來長期保存。除此之外，還可以利用細胞凍存的形式來購買、寄贈、交換和運送某些細胞

無血清細胞凍存液：產品優勢：1.化學成分明確，無任何外源蛋白和血清，適用于各類動物細胞株凍存。2.無需程序降溫，細胞復蘇率90%以上。3.凍存細胞可直接存放于-80℃冰箱，穩定保存數年。4.即用型產品，4℃可穩定保存。細胞凍存：1.收集融合率>90%的對數期的貼壁細胞或者懸浮細胞于離心管中。2.1000rmp離心5分鐘，去除離心管中的上清液，收集細胞沉淀。3.加入適量細胞凍存液于離心管中，使細胞濃度為1x106～1x107cells/mL。頭輕柔吹打混勻,Z成細胞懸液。4.將離心管中的細胞懸液分裝與細胞凍存管中，每管1mL或1.5mL。5.將分裝好的細胞直接凍存于-80℃冰箱中，可穩定凍存數年。6.如若長期保存，可在次日轉移至液氮中。待凍存管中細胞混合液完全融化后，立即加入1 ml細胞培養基于該冷凍管中與細胞混合。

無血清細胞凍存液的使用方法及注意事項：1.將分裝好的細胞凍存管，直接置于-80度冰箱過夜保存，次日投入液氮中保存即可備注：1、凍存過程中，第2步在冰袋附近操作時，低溫避免保護劑對細胞造成損傷。2、細胞凍存管一定要保證完全密封，否則在復蘇過程中有可能會炸（1）提前開啟水浴鍋，溫度調節到37（2）將凍存的細胞冷凍管從液氮中取出，迅速置于水浴鍋中融化，盡量1min融化，時間越短，對細胞影響越小。（3）將融化后的含細胞的冷凍保存液迅速析出置于新鮮培養基中充分混勻，（如細胞冷凍保存液為500ul，則加入到5ml新鮮培養基中，如細胞冷凍保存液位1ml，則加入10ml新鮮培養基中。）（4）混勻后立即離心，800轉，3min即可離心結束后棄上清，加入預溫的新鮮培養液。（5）混勻后分瓶置于二氧化碳培養箱中培養。（二氧化碳濃度根據培養基要求決定，通常為5%【注意事項】細胞系凍存密度備注正常人成纖維細胞1～310cells/ml雜交瘤細胞1～310cells/ml某些hybridoma會因冷凍濃度太高而在解凍24小時后死去。無血清細胞凍存液，2-8℃保存即可，無需再進行分裝。開封無血清細胞凍存液單價

將分裝好的細胞凍存管，直接置于-80 度冰箱過夜保存。廈門鄭州無血清細胞凍存液

細胞凍存時間和操作步驟：1、首先我們需要凍存培養液，通常細胞凍存液含10%的DMSO，或者是甘油、10-20%的小牛血清；、取對數生長期細胞，并且還需要用PBS進行清洗，需要注意在這里要丟棄掉舊的細胞凍存液；3.去除PBS，加入適量的胰蛋白酶，以覆蓋住培養皿表面為宜，然后把單層生長的細胞消化掉；然后離心1000rpm5min時間；4、去除胰蛋白酶，加入凍存培養液，輕輕吹打使細胞的分布變得均勻，調節細胞較終的密度為5×106/ml-1×107/ml，需要注意這是較佳的細胞密度；5、將細胞裝入凍存管之中，每管的含量應該保持在1～1.5ml之間。在凍存管上標明細名稱、時間、操作者；6、較后要說的就是細胞凍存的時間了，對于標準的凍存程序來說，需要進行梯度降溫，降溫速率-1～-2℃/min，一旦溫度達到-25℃以下時，那么就可增至-5℃～-10℃/min；等到-100℃的時候，可迅速的放入到液氮之中。廈門鄭州無血清細胞凍存液