免疫組化分類中免疫酶標方法,英瀚斯生物為您介紹。免疫酶標方法是繼免疫熒光后,于60年代發展起來的技術。基本原理是先以酶標記的抗體與組織或細胞作用,然后加入酶的底物,生成有色的不溶性產物或具有一定電子密度的顆粒,通過光鏡或電鏡,對細胞表面和細胞內的各種抗原成分進行定位研究。免疫酶標技術是目前定位準確、對比度好、染色標本可長期保存,適合于光、電鏡研究等。免疫酶標方法的發展非常迅速,已經衍生出了多種標記方法,目前在病理診斷中廣為使用的當屬***法(過氧化物酶-抗過氧化物酶)、ABC法(卵白素-生物素-過氧化物酶復合物)、SP法(鏈霉菌抗生物素蛋白-過氧化物酶)、即用型二步法(聚合物鏈接)等。免疫組化怎么做?步驟方法?遼寧動物組織免疫組化實驗
免疫組化在什么情況下進行組織抗原修復,抗原修復的條件是什么?
(1)由于組織中部分抗原在甲醛或多聚甲醛固定過程中,發生了蛋白之間交聯及醛基的封閉作用,從而失去抗原性。通過抗原修復,使得細胞內抗原決定族重新暴露,提高抗原檢測率。
(2)修復方法從強到弱一般分為三種,高壓修復、微波修復、胰酶修復。修復液也分為若干種(具體的可以查閱相關資料,大量的:中性的、高pH的等)。
(3)微波修復,我們一般用6min*4次,效果不錯。
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實驗失敗常見問題分析有哪些:
為什么在顯微鏡下觀察發現所有的切片都成陰性?
答:這種現象主要是由操作不當導致,可能的原因有:1.染色操作不當,致使染色失敗;2.漏加一種抗體或者制備出的抗體沒有活性;3.緩沖液中有疊氮化鈉,抑制了酶的活性;4.復染或脫水劑使用不當等。建議逐一排查,找到原因后重新進行實驗。
在顯微鏡下觀察發現所有的切片都成陽性,這是為什么?答:與上一個問題類似,出現的原因也是試驗操作存在問題,可能的原因有:1.切片在染色過程中抗體過濃,或者干片了;使用的呈色底物溶液已變色或呈色反應時間過長;3.抗體溫育的時間過長等。
在顯微鏡下觀察發現切片的背景很深,這是為什么?答:以下幾方面會導致切片的背景過深:1.蛋白質封閉不夠或所用血清溶血,造成抗體的非特異性反應;2.內源性過氧化酶沒有完全阻斷,顯色過程中過氧化酶與酶底物反應,造成背景;3.底物呈色反應時間過長或呈色反應后漂洗不徹底。
做免疫組化時如何選擇一抗?
1、單克隆和多克隆抗體的選擇。由一種克隆產生的特異性抗體叫做單克隆抗體。單克隆抗體能目標明確地與單一的特異抗原決定簇結合,就像導彈精確地命中目標一樣。另一方面,即使是同一個抗原決定簇,在機體內也可以由好幾種克隆來產生抗體,形成好幾種單克隆抗體混雜物,稱為多克隆抗體。在抗原抗體反應中,一般單克隆抗體特異性強,但親和力相對小,檢測抗原靈敏度相對就低;而多克隆抗體特異性稍弱,但抗體的親和力強,靈敏度高,但易出現非特異性染色(可以通過封閉等避免)。
2、應用范圍的選擇。有的一抗只能用于Westernblotting,或免疫組化、免疫熒光、免疫沉淀等;甚至標明石蠟切片或冰凍切片。
3、種屬反應性的選擇(speciesreactivity)。這一點很重要,表明這種抗體可能存在種屬差別,且這種抗體適合檢測哪種種屬動物體內的抗原。
4、種屬來源,一般兔來源的多是多克隆抗體;而小鼠來源的多是單克隆抗體,但也有另外。根據此來源來選擇相應的二抗。
5、生產廠家的選擇。
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免疫組化的局限性:在病理診斷中,隨著各種抗體新的用途不斷被發現及越來越多的新型抗體的出現,免疫組化在病理診斷和醫療中已有了很重要的位置,對于cancer診斷、鑒別診斷、分類及諸多方面產生了重大的影響。但是免疫組化技術還存在著缺陷和不足,作為病理醫生和病理技術人員不僅要充分認識到缺陷和不足,而且要努力避免由于缺陷和不足給診斷帶來的誤區,這就要求病理醫生和病理技術人員在工作中不斷學習與研究,在實際操作中總結經驗教訓,分析失敗原因,努力實現操作規范化、標準化,才能充分發揮免疫組化在病理診斷及鑒別診斷、臨床醫療中的指導作用。有沒有做免疫組化比較好的公司?浙江動物組織免疫組化實驗
免疫組化檢測多少錢?遼寧動物組織免疫組化實驗
在臨床應用中,免疫組化還可以進一步分類不同qi官與組織交界處cancer。由于重疊的特征,在一些組織qi官交界處的cancer,只憑組織學基礎對cancer進行分類很困難。如胃腸道梭形細胞肉瘤是肌肉起源的平滑肌肉瘤,是間質起源的胃腸道間質瘤(GIST),還是神經起源的神經鞘瘤;同樣發生于組織交界處的cancer有睪丸胚胎cancer與精原細胞cancer,兩者較難區別,且醫療與預后明顯的不同,但用免疫組化檢測角蛋白就較易于區別:角蛋白陰性則為精原細胞cancer,而角蛋白陽性則為胚胎cancer。遼寧動物組織免疫組化實驗
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